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March 20, 2025
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Los tubos de vacío dependen dePrincipio de Bernoulliygradientes de presiónEl tubo pre-evacuado crea unapresión negativaEl flujo sanguíneo se reduce a la presión venosa (normalmente de 20 a 30 kPa), que supera la presión venosa (5 a 15 mmHg).- ¿ Qué?sigueLa ecuación de Hagen-Poiseuille:
- ¿ Qué?=8El- ¿ Qué?PiDPr y4- ¿ Qué?
¿Dónde?DP= gradiente de presión,r y= radio de la aguja,El= viscosidad de la sangre (~3 ∼4 mPa·s), y- ¿ Qué?= longitud de la aguja.
Conocimiento clave: Las agujas con dimensiones más pequeñas (por ejemplo, 21G vs. 23G) reducen el tamaño de las agujas.r y, reduciendo las velocidades de flujo pero minimizando el riesgo de hemólisis.
Vidrio: Químicamente inerte, ideal para pruebas de oligoelementos (sin lixiviación).
Las demás materias primas: Resistente a las roturas, más ligero, pero puede requerir recubrimientos de silicona para reducir la adhesión celular.
Los geles de polímero (por ejemplo, a base de poliéster) tienen unadensidadde 1,04·1,08 g/cm3, intermedio entre el suero (1,02 g/cm3) y las células (1,08·1,10 g/cm3). Durante la centrifugación (1,200·2,000 RCF), el gel migra para formar una barrera,que impide que el metabolismo celular altere los analitos.
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Aditivo | Mecanismo | Uso del ejemplo |
---|---|---|
La EDTA | Quelatos Ca2+ → inhiben la cascada de coagulación | CBC (conservación de la morfología celular) |
Citrato de sodio | Se une a Ca2+ → impide la conversión de fibrinógeno → fibrina | Estudios de coagulación (PT/APTT) |
Heparina | Activar la antitrombina III → inhibir la trombina | Los electrolitos plasmáticos (K+, Na+) |
Nota técnica: La proporción estequiométrica de EDTA es de 1,5 ∼ 2,2 mg/ml de sangre.
Las partículas de sílice en los tubos rojos se activanFactor de Hageman (FXII)La optimización de la superficie (~ 300 m2/g) garantiza una rápida formación de coágulos (20-30 min).
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Los demás: Tubos separadores de suero (SST) para la detección de IgG/IgM.
Desafío: Interferencia del gel en ELISA → resuelta mediante ultracentrifugado (10.000 RCF, 10 minutos).
Datos obtenidos: Sensibilidad mejorada del 85% → 94% (J. Clin. Microbiología., 2023).
Biopsias en líquido:
Los demás: Tubos de ADN libres de células (Streck) con fijantes patentados.
Física: Estabiliza las nucleasas a través deCheladores(EDTA) yreguladores osmóticospara prevenir la fragmentación del ADN.
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Regula las dimensiones de los tubos, los aditivos y el etiquetado.
Tolerancia de volumen: ± 10% para los tubos < 10 ml.
Umbral de la hemólisis: hemoglobina libre < 0,5 g/l (espectrofotometría a 540 nm).
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Figura 1: Presión frente al volumen de extracción de sangre en tubos de vacío
(Incrustado gráfico interactivo aquí comparando 21G vs 23G rendimiento de la aguja)
Figura 2: Eficiencia del separador de gel por velocidad de centrifugación
(Diagrama de barras que muestra el rendimiento de plasma libre de células a 1.000 vs. 2.000 RCF)
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A: Para mantenerfuerza iónicaPara una medición precisa del factor de coagulación, el llenado insuficiente diluye los factores → PT/APTT falsamente prolongado.
R: Los plastificantes (por ejemplo, los ftalatos) en los tubos de PET pueden lixiviar Zn2+ → utilizar tubos certificados libres de oligoelementos.
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Hemólisis: Ruptura de glóbulos rojos debido al estrés de corte o desequilibrio osmótico.
Orden del sorteo: Secuencia para evitar la contaminación cruzada (por ejemplo, citrato antes de EDTA).
TSS: tubo de separación del suero (barrera de gel).
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El problema: pérdida de vacío variable en regiones de gran altitud (por ejemplo, montañas de los Andes).
Solución: Tubos con tapones reforzados (CLSI H21-A5).
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Se aplicará el procedimiento siguiente:: Procedimientos de recogida de sangre.
Química clínica(2023): Interferencia aditiva en la espectrometría de masas.
Directrices de la OMS: Almacenamiento en tubo a 4 ̊25°C, evitar la congelación.
Sugerencia de elementos interactivos:
Glosario de consejos de herramientas: Mueva el cursor sobre términos como RCF para ver las definiciones.
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